HE染色是石蠟切片技術(shù)中常用的染色方法之一，簡稱為蘇木精-伊紅染色法。該方法使用堿性的蘇木精染液將細胞核內(nèi)的染色質(zhì)和胞質(zhì)內(nèi)的核酸染成紫藍色，同時使用酸性染料伊紅將細胞質(zhì)和細胞外基質(zhì)中的成分染成紅色。
1、切片出現(xiàn)白色斑點
原因：(1) 烘片溫度過低，導致玻片未干透；(2) 切片在二甲苯中停留時間過短；(3) 二甲苯使用時間過長，導致脫蠟不效果不好。
對策：若玻片未干透，先用無水乙醇去除水分，再重新脫蠟。若斑點是由于停留時間過短或使用時間過長造成的，則需重新操作，延長停留時間或更換二甲苯。
2、細胞核染色暗淡
原因：(1) 切片在蘇木精染色液中停留時間太短；(2) 蘇木精染色液過度氧化；(3) 分化步驟時間過長；(4) 骨組織脫鈣過度。
對策：重新染色，若固定時間過長導致染色能力減弱，需延長蘇木精染色液停留時間或采用增加組織嗜堿性的方法。
3、細胞核過染
原因：(1) 切片在蘇木精染色液中停留時間過長；(2) 切片過厚；(3) 分化步驟時間過短。
對策：若非切片過厚導致，重新染色并適當調(diào)整染色和分化時間。若是切片過厚，需重新切片。
4、細胞核呈紅、棕色改變
原因：蘇木精染色液過度氧化或切片返藍不足。
對策：檢查蘇木精染色液的染色能力，及時更換過度氧化的液體。在蘇木精染色后，用流水、溫水或弱堿性溶液如稀氨水、0.2%碳酸氫鈉等進行足夠的藍化處理。
5、伊紅著色淡
原因：（1）伊紅染液的pH值可能大于5；（2）藍化液殘留過多；（3）切片太??；（4）切片經(jīng)伊紅染色后在乙醇脫水時間過長。
對策：檢查伊紅染液的pH值，如果必要的話，用乙酸將其調(diào)節(jié)在4～5之間，從而使伊紅染色色彩艷麗。確保每次藍化步驟完成后，使用的弱堿性溶液被充分洗去，玻片上沒有殘留的弱堿性溶液。檢查切片的厚度。脫水時不要讓切片在低濃度乙醇停留時間過長，因為含水多的低濃度乙醇會將伊紅的顏色分化掉。
6、細胞質(zhì)過染
原因：（1）伊紅染色液濃度太高，特別是焰紅燃料、四溴四氯熒光素鈉的存在；（2）切片在伊紅染色時間過長；（3）切片在伊紅染色后經(jīng)乙醇脫水步驟時過的太快，而使乙醇分化伊紅的作用不能產(chǎn)生。
對策：適當稀釋伊紅染色液，減少伊紅染色時間，或者使切片在乙醇脫水等步驟時，停留時間相對均勻。同樣，也要檢查切片的厚度是否合適。
7、切片中出現(xiàn)藍黑色沉淀物
原因：蘇木精染色液中的金屬膜，黏附在玻片上。
對策：每天染色前仔細過濾蘇木精染色液，或建議使用半氧化蘇木精染色液，如Gill蘇木精染色液,可以避免過多的金屬膜產(chǎn)生。
8、顯微鏡下見切片內(nèi)有大量水珠
原因：切片經(jīng)梯度乙醇處理后沒有脫水，導致二甲苯透明中性樹膠封固后殘留大量水分。
對策：移去蓋玻片，用二甲苯溶解封固劑如中性樹膠。將切片置入新鮮的無水乙醇中，待切片重新脫水后，用新二甲苯透明，中性樹膠封固。所有用于脫水和透明的液體，在使用一定時間以后，應即時更換。
9、光鏡下切片某些區(qū)域難以聚焦
原因：蓋玻片上可能有封固切片的封固劑。
對策：移去蓋玻片，重新用干凈的蓋玻片封片。
10、封固劑從蓋玻片與載玻片之間的縫隙回縮
原因：（1）蓋玻片彎曲或不平整；（2）封固劑含二甲苯過多，稀釋過度。
對策：移去蓋玻片，重新找一張蓋玻片，用干凈的封固劑封片。每天保證盛裝封固劑的容器密封性良好，在封固結(jié)束的時候蓋緊蓋子。盡量使用小的容器盛裝封固劑，一旦封固劑太粘稠，就可以廢棄不再使用。
11、切片從脫蠟的二甲苯經(jīng)過梯度乙醇進入水溶液時，水和玻片呈現(xiàn)乳白色混濁改變
原因：用于脫蠟的二甲苯?jīng)]有被乙醇洗干凈。
對策：更換洗滌二甲苯的乙醇液體，把切片重新放回無水乙醇，脫去玻片上的水分。
12、細胞核灰藍
原因：（1）組織處理溫度過高、過熱，在石蠟停留的時間過長；（2）固定時間太短，接下來就直接在高濃度的乙醇中行脫水處理。
對策：理論上來說，加熱處理僅在組織浸蠟步驟才使用，組織不能在熱的蠟液中停留過長時間。如果由于某些原因不能進行下步包埋處理，完成浸蠟處理后的組織，可將組織連同塑料包埋盒一并放置在室溫空氣中，冷卻凝固，以備包埋。待需要包埋時再重新加溫直至石蠟融化即可。組織在處理前必須確保固定良好，脫水最好能從低濃度的乙醇開始。
13、切片中出現(xiàn)類似色素樣的點狀結(jié)晶和黑色光滑的細胞核
原因：切片封片前放置在空氣中時間太長，以至于二甲苯揮發(fā)切片干燥所致。
對策：移去組織切片上的蓋玻片和封固劑，重新處理。將切片水洗數(shù)分鐘，然后重新脫水、透明、封固。封片過程中要保持組織切片的輕度濕潤，盡量不要讓其干燥。
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